实时荧光定量PCR检测步骤
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实时荧光定量PCR检测步骤
实时荧光定量PCR(qPCR)作为一项高灵敏度的核酸定量技术,其结果的可靠性与实验操作的规范性密切相关。遵循一套严谨的实时荧光定量pcr检测步骤,是确保数据准确、结论有效的基础。本文将系统梳理从样本准备到数据分析的完整标准化流程,为实验操作提供清晰指引。
一、实验前的周密准备
规范的流程始于细致的准备。这是确保后续实时荧光定量pcr检测步骤顺利进行的基石,涉及场地、试剂与实验设计。
分区与防污染设置:强烈建议在不同的物理空间或超净工作台内,分别进行样本前处理/核酸提取、PCR反应体系配制和PCR产物分析。实验台面、移液器和耗材应专用,并定期使用DNA/RNA清除剂清洁,这是防止污染的关键举措。
试剂与耗材准备:将所需试剂(如qPCR预混液、引物探针、模板)充分解冻并置于冰上。准备好无菌、无核酸酶的PCR管/板和封膜。
实验方案设计:明确实验目的(绝丨对定量/相对定量),设计合理的样本分组,并规划好技术重复(通常每个样本设3个复孔)和必要的对照。
二、核心操作步骤分解
完整的实时荧光定量pcr检测步骤,可以分解为以下四个主要阶段。
首要:样本处理与核酸提取
样本收集与保存:根据样本类型(如血液、组织、细胞、植物材料),使用适当的方法采集,并立即置于合适条件下(如液氮速冻、-80℃保存或特定保存液)以防止核酸降解。
核酸提取:采用可靠的商业化试剂盒或经典方法(如Trizol法)提取总RNA或DNA。提取后需评估核酸的纯度(如A260/A280比值应在1.8-2.0之间)和浓度,并使用琼脂糖凝胶电泳或生物分析仪检查完整性。
cDNA合成(用于基因表达分析):如果检测目标是mRNA,则需将高质量RNA通过逆转录反应合成cDNA。此步骤对RNA质量和逆转录酶效率要求高,直接影响后续定量准确性。
第二步:PCR反应体系的配制
这是实时荧光定量pcr检测步骤中需高度精确和谨慎的环节。
配制预混液:在专用的洁净区域,根据反应数量和复孔数,计算并配制包含qPCRMasterMix、引物、探针(或染料)和无核酸酶水的预混液。充分混匀后分装至每个反应孔。
加入模板:最后向各孔中加入定量的DNA或cDNA模板。建议设置以下对照:
无模板对照:用水代替模板,用于检测试剂或环境是否存在污染。
阳性对照:使用已知含有目标序列的模板,确认整个反应体系工作正常。
密封与离心:使用光学透明封板膜密封反应板,短暂离心,确保所有液体集中在管底且无气泡。
第三步:上机运行与程序设置
上机:将反应板放入实时荧光定量PCR仪中。
编辑运行程序:在仪器配套软件中,创建新程序。一个标准的三步法程序通常包括:
预变性/激活:95℃,30秒至2分钟(激活热启动DNA聚合酶)。
循环扩增(40-45个循环):包含变性(95℃,5-15秒)、退火(引物特异性温度,如55-60℃,15-30秒)和延伸/收集荧光信号(72℃或与退火合并,于此步采集荧光)三个阶段。
熔解曲线分析(SYBRGreen法必需):程序结束后,从60℃缓慢升温至95℃,连续采集荧光信号,用于分析产物特异性。
第四步:数据分析与结果解读
运行结束后,进入实时荧光定量pcr检测步骤的分析阶段。
设定分析参数:在分析软件中,合理设置基线和阈值线。软件会自动给出每个反应的Ct值。
质量评估:检查扩增曲线是否平滑典型,确认NTC无扩增,熔解曲线是否为单一锐峰(SYBRGreen法)。
定量计算:根据实验设计,使用标准曲线法进行定量,或使用2-ΔΔCt法进行相对定量(需以内参基因对数据进行均一化)。
三、关键注意事项
在整个实时荧光定量pcr检测步骤中,以下几点对于成功尤为关键:
避免污染:严格分区操作,勤换手套,使用带滤芯的枪头。
精确加样:使用校准过的移液器,确保小体积加样的准确性。
引物与探针设计:好的设计是成功的核心,应通过BLAST验证特异性,并通过预实验优化浓度。
模板质量:“垃圾进,垃圾出",高质量的模板是获得可靠数据的前提。
完整记录:详细记录所有试剂批号、仪器运行程序、分析设置和原始数据,确保实验的可重复性。
总结
总而言之,一套标准化的实时荧光定量pcr检测步骤是一个环环相扣的系统工程,涵盖了从实验设计、样本准备、精细操作到严谨分析的完整链条。任何一步的疏忽都可能影响最终结果的可靠性。熟练掌握并严格遵守这流程,将能限度地发挥实时荧光定量PCR技术的强大威力,为您的科学研究提供坚实、可信的数据支撑。建议新手在初期严格遵循标准操作规程,并在实践中不断积累经验以优化细节。
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